ヒトデ胚間充織細胞に発現するアスタチン属の膜型メタロプロテアーゼ（MC5分子）には増殖誘起能があり、胚成長に必須であると考えられる。その分子機序として、MC5分子は潜在型Transforming growth factor (TGFb1)の分子内切断を行い、活性型に変換させている可能性がある。本研究では、この仮説を検証した。
（１）	RNAseq法で得たヒトデ原腸胚の発現遺伝子情報をもとに、TGFb1遺伝子を単離した。これをもとに、N端とC端の両端をヒスチジンで標識したHisタグ融合タンパク質を培養下でHEK293細胞に合成させ、分泌前と分泌後のTGFb1の状態を比較した。Hisタグ親和性カラムでの精製を介し、還元条件下でのSDS-PAGE後、抗His抗体で両TGFb1のウエスタンブロットを行った。その結果、分泌後TGFb1では少なくとも４本の実体予測が困難なバンド（Unexpplainable: UE）が検出されるのに対し、分泌前TGFb1では潜在型を示すTGFb1の分子量46kDaの1本の濃いバンドと17kDaの１本の薄いUEバンドが認められた。以上から、HEK293細胞細胞内の分泌前TGFb1の方が本実験の使用には合致していた。
（２）	MC5分子が潜在型TGFb1を分子内切断していることをin vivoで検証する実験系として、３日幼生から外胚葉細胞を除去した原腸複合体（Archenteron complex: AC）を作成した。ACには、原腸細胞以外に間充織細胞と細胞外マトリックスが含まれていることに加え、試験管内でのTGFb1との反応操作が容易である。約150個体分のACを25μl のTGFb1中で24時間、室温、メトロノーム式振盪下でインキュベートした。上記（１）と同条件でウエスタンブロット解析を行ったところ、非AC下で検出されていた分泌前TGFb1の２本のバンドは消失し、新たに活性型と思われる15kDaの薄いバンドが検出された。一方、この実験で期待される活性型TGFb1のカセット機能を果たす31kDaのLAP領域のバンドは検出されなかった。
今後、潜在型TGFb1を１本のバンドとして検出可能な無細胞系でのタンパク合成、ACでなく純粋な間充織細胞集団への変更、インキュベート時間の検討など実験系をさらに洗練させることを考えている。
Astacin metalloprotease (MC5 molecule) is equipped with the plasma-membrane of embryonic and larval mesenchyme cells of the starfish, Asterina pectinifera. We have previously shown that MC5 molecule involves to proliferative induction against the embryonic cells during growth of body-size. Here, we examine the hypothesis that MC5 molecule lets transforming growth factor (TGFb1) to change from latent- to active-form via its intramolecular dissection.
(1) A TGFb1 gene was isolated through RNA seq method on embryos at the gastrula-stage. Then, in culture system of HEK 293 cells, TGFb1 protein was synthesized, while being tagged with poly histigine amino acids at the both N- and C-terminal sites, and purified by His tag-affinity column. In order to compare state of the pre- and post-secreted TGFb1, each TGFb1 was conducted to western blot analysis with anti-His tag antibody after SDS-PAGE in a reduction condition. It was shown, in the post-secreted TGFb1, that the antibody reacts to at least four bands, in which latent form of TGFb1 was unexplainable (UE-band). On the other hand, in the pre-secreted TGFb1, it was obviously detected a MW46kDa-band corresponded with active form of TGFb1, although an UE-band was also reacted with the antibody. We, therefore, proceeded the next experiment by using of pre-secreted TGFb1.
(2) In order to examine whether MC5 molecule dissects intramolecularly TGFb1, we prepared archenteron complex (AC) of 3 day-larva in which the ectodermal cells were removed, but the mesenchyme cells were remained in enclosure of the blastocoelic extracellular matrix in around the archenteron. The AC is available to interact the mesenchyme cells with TGFb1 simply in incubation without any injection techniques. When approximately one hundred fifty ACs were incubated with TGFb1 for 24h at room temperature in a gentle shaking experiment of the 25ul-scale volume and then carried out western blot as done in (1), it was shown that the two bands described in (1) was not detected and one 15kDa-band newly appeared. Although the 15kDa-band was faintly detectable, this band size corresponds to active form of TGFb1. On the other hand, we could not detect any 31kDa-band corresponded to the LAP domain that has a cassette-function for TGFb1.
At the present, it is necessary to elaborate experimental system in the terms of adoption of cell free protein synthesis system for TGFb1, utilization of a pure population of mesenchyme cells instead for AC, further examinations of incubation time, and so on.